АКТИВНІСТЬ АНТИОКСИДАНТНИХ ФЕРМЕНТІВ У СИРОВАТЦІ КРОВІ ЩУРІВ ЗА УМОВ КАРРАГІНАН-ІНДУКОВАНОГО ЗАПАЛЕННЯ СУГЛОБУ ТА ПРОФІЛАКТИЧНОГО ВВЕДЕННЯ ХОНДРОЇТИН СУЛЬФАТУ
DOI 10.17721/1728_2748.2020.81.46-49
Ключові слова:
запалення суглобу, хондроїтин сульфат, супероксиддисмутаза, каталаза, сироватка кровіАнотація
Серед захворювань опорно-рухового апарату найбільш поширені хвороби суглобів. Важливим є проведення ефективної профілактики зазначених захворювань, щоб зупинити або пригальмувати розвиток патологічних змін в організмі. У зв'язку із цим набуває актуальності питання пошуку засобів для відновлення суглобів. У профілактиці та лікуванні захворювань суглобів має перспективи використання хондроїтин сульфату, який є природним компонентом міжклітинної речовини хряща. Проаналізовано профілактичну дію хондроїтин сульфату на активність супероксиддисмутази та каталази у сироватці крові щурів за умов каррагінан-індукованого запалення суглобу. Дослідження проведені на білих нелінійних статевозрілих щурах-самцях масою 180–240 г з дотриманням загальних етичних принципів експериментів на тваринах. Усіх тварин розділяли на чотири експериментальні групи. Перша група контроль: тваринам субплантарно вводили 0,1 мл 0,9-відсоткового розчину NaCl у задню праву кінцівку. Друга група – щурам щоденно протягом 28 діб внутрішньом'язово вводили терапевтичну дозу 3 мг×кг-1 хондроїтина сульфату. Третя група – тваринам щоденно протягом 28 діб внутрішньом'язово вводили 0,1 мл 0,9-відсоткового розчину NaCl у задню праву кінцівку та на 29 день моделювали запальний набряк кінцівки (тваринам субплантарно вводили 0,1 мл 1-відсотковий розчин каррагінану у задню праву кінцівку). Четверта група – щурам щоденно, протягом 28 діб внутрішньом'язово вводили терапевтичну дозу 3 мг×кг-1 хондроїтина сульфату, після чого на 29 день моделювали запальний набряк кінцівки. Загальна кількість тварин, залучених до експериментальних досліджень, становила 40 особин. Супероксиддисмутазну активність оцінювали за здатністю ферменту конкурувати із нітросинім тетразолієм за супероксидні радикали. Каталазну активність вимірювали за кількістю незруйнованого пероксиду водню у пробі. Уміст білка вимірювали за методом Лоурі. Виявлено, що за умов карагінан-індукованого запалення суглобу у сироватці крові порушується робота системи антиоксидантного захисту: активність супероксиддисмутази знижується в 1,5 раза, при цьому каталазна активність зростає в 2,1 раза порівняно з контролем. Профілактичне введення хондроїтин сульфату тваринам із каррагінан-індукованим запаленням суглобу сприяє відновленню показників антиоксидантної системи.
Посилання
1. Hunter D. J., Bierma-Zeinstra S. Osteoarthritis. Lancet. 2019 Apr. 27; 393(10182): 1745–1759.
2. O'Neill T. W., McCabe P. S., McBeth J. Update on the epidemiology, risk factors and disease outcomes of osteoarthritis. Best Pract Res Clin Rheumatol. 2018 Apr.; 32(2): 312–326.
3. Bishnoi M., Jain A., Hurkat P., Jain S. K. Chondroitin sulphate: a focus on osteoarthritis. Glycoconj. J. 2016. Vol. 33, № 5. P. 693–705.
4. Volpi N. Chondroitin Sulfate Safety and Quality. Molecules. 2019 Apr. 12;24(8):1447.
5. Drevet S., Gavazzi G., Grange L. et al. Reactive oxygen species and NADPH oxidase 4 involvement in osteoarthritis. Exp. Gerontol. 2018. Vol. 111. P. 107–117.
6. Morris C. J. Carrageenan-induced paw edema in the rat and mouse. Methods Mol. Biol. 2003. Vol. 225. P. 115–121.
7. Chevari S., Chaba I., Sekey Y. Rol superoksiddismutazyi v okislitelnyih protsessah kletki i metod opredeleniya ee v biologicheskih materialah. Lab. delo. 1985. # 11. S. 678–681.
8. Korolyuk M. A., Ivanova L. K., Mayorova I. G., Tokareva V. A. Metod opredeleniya aktivnosti katalazyi. Klinicheskaya laboratornaya dIagnostika. 1988; (4): 44–47.
9. Lowry O. H., Rosebrough N. J., Farr A. L., Randall R. J. Protein measurement with Folin phenol reagent J. Biol. Chem. 1951. Vol. 193, № 1. P. 265–275.
10. Blokhina O., Dranytsyna A., Kot L. et al. Vilnoradykalni protsesy u sy-rovattsi krovi shchuriv za umov karrahinan-indukovanoho zapalennia zadnoi kintsivky ta tryvaloho profilaktychnoho vvedennia khondroityna sulfatu. Visnyk Kyivskoho nats. un-tu imeni Tarasa Shevchenka, Ser.: Problemy rehuliatsii fiziolohichnykh funktsii. 2018. Vyp. 1 (25). S. 6–9.
11.Canas N., Gorina R., Planas A. M. et al. Chondroitin sulfate _ inhibits lipopolysaccharide-induced inflammation in rat astrocytes by preventing nuclear factor kappa B activation. Neuroscience. 2010; 167: 872–879.
12. Stabler T. V., Huang Z., Montell E. et al. Chondroitin sulphate inhibits NF-κB activity induced by interaction of pathogenic and damage associated molecules. Osteoarthritis Cartilage. 2017. Vol. 25 (1). P. 166–174.
13. Campo G. M, Avenoso A., Campo S. et al. Chondroitin sulphate: antioxidant properties and beneficial effects. Mini Rev. Med. Chem. 2006. Vol. 6 (12). P. 1311–1320.
14. Rani A., Baruah R., Goyal A. Physicochemical, antioxidant and biocompatible properties of chondroitinsulphate isolated from chicken keel bone for potential biomedical applications. Carbohydr Polym. 2017 Mar. 1; 159: 11–19.
15. Ajisaka K., Oyanagi Y., Miyazaki T., Suzuki Y. Effect of the chelation of metal cation on the antioxidant activity of chondroitin sulfates. Biosci Biotechnol Biochem. 2016. Vol. 80 (6). P. 1179–1185.
