ВПЛИВ НИЗЬКОІНТЕНСИВНОГО ВИПРОМІНЮВАННЯ ОПТИЧНОГО ДІАПАЗОНУ СПЕКТРА (λ=630–660 НМ) НА ПОКАЗНИКИ ІМУНОРЕЗИСТЕНТНОСТІ У ТВАРИН З ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИМ ПЕРИТОНІТОМ
DOI 10.17721/1728_2748.2020.82.35-41
Ключові слова:
запалення, низькоінтенсивне випромінювання, фагоцитоз, цитотоксичністьАнотація
Лікування запальних і септичних станів представляє серйозну проблему через існуючу стійкість до антибіотиків. Необхідні нові методи лікування з використанням біологічних і фізичних факторів, що впливають на перебіг запальних реакцій під час хронічних процесів. Важливим є досягнення розуміння механізмів взаємодії світлових фотонів із клітинними акцепторами, які забезпечують реактивність і резистентність. Мета – оцінити вплив низькоінтенсивного світла червоного спектра (l = 630–660 нм) на перебіг запального процесу у тварин з ЛПС-індукованим перитонітом. Було виділено 3 групи: А – інтактні тварини; Б – тварини з перитонітом, викликаним внутрішньочеревинним уведенням ЛПС; В – тварини з ЛПС-індукованим перитонітом після багаторазового впливу червоного світла. Опромінення черевної стінки проводили світлодіодними матрицями Коробов А. В. – Коробов В. В. "Барва-Флекс/24ФМ", які випромінюють у червоній області спектра. Використовували методи світлової мікроскопії (оцінювання бар'єрної функції нейтрофілів у кисненезалежному фагоцитозі, визначення ступеня лімфоцитотоксичності) та спектрофотометрії (визначення концентрації циркулюючих імунних комплексів). У тварин після індукції перитоніту (група В) спостерігали пригнічення фагоцитозу, яке проявлялося у зниженні адгезії й ендоцитозу антигенів нейтрофілами порівняно з контролем. Використання світлової дії червоного спектра (група С) активувало фагоцитарні клітини і зменшувало ступінь лімфоцитотоксичності і концентрацію циркулюючих імунних комплексів на різних стадіях запального процесу. Отже, дія червоного світла сприяла нормалізації імунорезистентності у тварин, тим самим знижуючи антигенне навантаження за рахунок активації інфільтраційної й ексудаційної стадій запального процесу й індукції регенеративних процесів після повторного опромінення в кінці експерименту.
Посилання
1. Karandashov V., Petuhov E. Ultravioletbloodirradiation. M.: Medicine, 1997. 199 р.
2. Karandashov V., Petuhov E., ZrodnikovV. Phototherapy. M.: Medicine, 2001. 159 p.
3. Adamskaya N., Dungel P., Mittermayr R. et al. Light therapy by blue LEDimproves wound healing in an excision model in rats. Injury. 2010; 41(7):1038-42. doi: 10.1016/j.injury.2010.03.023
4. Vasilev N., Sysoeva G., Danilenko E. Immunological aspects of photodynamic therapy. Medical immunology. 2003; 5:507-18.
5. Korbelik M., Sun J. Cancer treatment by photodynamic therapy combined with adoptive immunotherapy using genetically altered natural killer cell line. Int. J. Cancer. 2001; 93:269-74. doi: 10.1002/ijc.1326.
6. Makolkin V. Metabolic syndrome. M.: Medical Information Agency, 2010. 144 p.
7. Rundo A., Kosinets V. Application of the combined phototherapy in complex treatment of patients with complications of diabetic foot syndrome. NovostiKhirurgii. 2016; 24 (2): 131–137.doi: 10.18484/2305-0047.2016.2.131
8. Tershak S., Karmash O., Ljuta M., Dudok K., Korobov A., Sibіrna N. Influence of low-intensity electromagnetic radiation on the functional activity of rat leukocytes in experimental diabetes mellitus. "Youth and Progress in Biology": Book of abstracts, Lviv. 2018: 101-102.
9. Karmash O.I., Liuta M.Y., Korobov A.M., Sybirna N.O. Effect of photobiomodulation therapy on differential white blood cells count and leukocyte antioxidant enzymes activity in streptozotocin-induсed diabetic rats. Application of Lasers in Medicine and Biology: Book of abstracts, Kharkiv. 2018:176-178.
10. Cornejo-Garrido J., Becerril-Chávez F., Carlín-Vargas G. et al. Antihyperglycaemic effect of laser acupuncture treatment at BL20 in diabetic rate. Acupunct Med. 2014;32:486-494.
11. Lim J., Ali Z.M., Sanders R.A. et al. Effects of low-level light therapy on hepatic antioxidant defense in acute and chronic diabetic rats. J BiochemMolToxicol. 2009; 23(1): 1-8.
12. Majboroda A.A., Kirdej E.G., SeminskijI.Zh., Cibel B.N. Inflammation induction mechanisms. SiberianMedicalJournal.1994;1(1-2),5-9.
13. Shmarakov I.O., Marchenko M.M., Spivak M.Ya. Fundamentals of virology. Chernovzi: Chernovezky national University. 2011;320.
14. Muniz-JunqueiraM.I., Peçanha L.M., Silva-FilhoV.L. etal. Novel microtechnique for assessment of postnatal maturation of the phagocytic function of neutrophils and monocytes. Clinical and diagnostic laboratory immunology. 2003;10:1096-1102.
15. Klimova E.M., Korobov A.M., Bojko V.V. et. al. Immunocorrective effect of photodynamic therapy in patients with purulent-septic complications. Application of lasers in medicine and biology: Book of abstracts, Kharkiv. 2016: 126-129.
16. Mayanskij D.N., Ursov I.G. Lectures in Clinical Pathology: A Guide for Physicians. Novosibirsk, 1997:249.
17. Terasaki P.I., Melelland J.D. Microdroplet assay of human serumcytotoxins. Nature. 1964;204:998-1000 https://doi.org/10.1038/204998b0.
18. Grinevich Yu.A., Alferov L.N. Determination of immune complexes. Laboratory work. 1981;8:493-496.
19. Raab O. The action offluorescent material on infusorien. Z. Biol. (Muenich). 1900;39:524-546.
20. Yurina N.P., Mokerova D.V., Odincova M.S.Light-induced stress proteins of phototroph plastids. Plant physiology. 2013;60(5):611-624.
21. Kaznacheev C.V., Molchanova L.V. Changes in the biochemical parameters of an animal under the influence of visible light. Mental selfregulation. Novosibirsk. 1983;3:301-311.
22. Daly S.M. Go with the flow': A review of methods and advancements in blood flow imaging. J. Biophotonics. 2013;6(3):217-255. doi: 10.1002/jbio.201200071
23. Akopov A., Rusanov A., Gerasin A. et al. Preoperative endobronchial photodynamic therapy improves resectability in initially irresectable (inoperable) locally advanced non-small cell lung cancer. Photodyagnosis and photodynamic therapy. 2014;3:259-264. doi: 10.1016/j.pdpdt.2014.03.011
24. Klebanov G.I., Krejnina M.V., Chukaeva I.I. Changes in superoxide dismutase activity during stimulation of polymorphonuclear leukocytes in peripheral blood. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 1990;109.4:333-434.
25. Lyubovceva L.A., Lyubovceva E.V., Vorobeva O.V. Age and species differences in the neuroamine structures of the thymus of rats, cats and humans. Topical issues of clinical medicine: collection of articles. materials of the regional scientific and practical conference. Cheboksary; 2017:177-184.
26. Klimova O.M., Lavinska O.V., Bychenko E.A. Phagocytes barrier functions and complement system proteins in patients with lower limbs trophic ulcers before and after combined exposure. Scientific achievements of modern society. Abstracts of the 12th International scientific and practical conference. Cognum Publishing House. Liverpool, United Kingdom. 2020:17-222
