ВПЛИВ МІЦЕЛІЮ PHOLIOTA SPP. (STROPHARIACEAE, BASIDIOMYCOTA) НА СХОЖІСТЬ НАСІННЯ Й РІСТ LEPIDIUM SATIVUM L. ТА CUCUMIS SATIVUS L.

DOI 10.17721/1728_2748.2021.84.53-60

Автор(и)

  • Л. РЕГЕДА Інститут ботаніки імені М. Г. Холодного НАН України, Київ, Україна
  • Н. БІСЬКО Інститут ботаніки імені М. Г. Холодного НАН України, Київ, Україна
  • Г. АЛЬ-МААЛІ Інститут ботаніки імені М. Г. Холодного НАН України, Київ, Україна

Ключові слова:

алелопатія грибів, Pholiota, сендвіч-метод біодосліджень

Анотація

Basidiomycetes є вельми розмаїтою групою еукаріотичних організмів за фізіологічними параметрами. Деякі організми, такі як рослини або гриби, здатні виділяти певні вторинні метаболіти, які можуть впливати на оточуючі організми. Нині кількість досліджень грибів та їхніх біологічно активних компонентів значно збільшилася у зв'язку з потенційним упровадженням у різні біотехнологічні процеси. Деякі речовини, що виділяються грибами, можуть впливати на ріст і подальший розвиток рослин, що є поруч. У цьому дослідженні вивчено алелопатичну дію представників роду Pholiota. Біомаса грибів семи досліджуваних видів роду Pholiota обрана для вивчення впливу на проростання насіння огірків (Cucumis sativus L.) та салату (Lepidium sativum L.). Результати нашого експерименту показали, що біомаса видів роду Pholiota не впливала на схожість насіння обох видів рослин. Стовідсоткову схожість насіння фіксували як у контрольних, так і в експериментальних зразках. Додавання вегетативного міцелію видів Pholiota spp. призвело до пригнічуючого алелопатичного ефекту, який впливав і на проростання насіння, і на довжину досліджуваної рослини (пагонів і коріння), а також змінював морфологію коренів (опушення, зміни бічних коренів). Інгібуючий ефект на довжину проростків становив 8,6 %–87,1 % у випадку C. sativus та 42,2 %–91,8 % для L. sativum залежно від видів роду Pholiota, що використовувалися. Слід відмітити алелопатичні властивості Pholiota subochracea, де коефіцієнт росту проростків не перевищував 12,9 % порівняно з контрольною групою. Цей результат свідчить про те, що представники роду Pholiota мають значний регулятивний вплив на ріст салату й огірків. Наведені результати дають можливість припустити, що досліджені види можуть відігравати значну роль у взаємовідносинах усередині екосистем.

Посилання

Araya H. Allelopathy of mushrooms. In New Developments in Allelopathy Research; Price, J.E., Ed.; Nova Publisher: New York, NY, USA, 2015, 1-14.

Bisko N, Lomberg M, Mykchaylova O, Mytropolska N. IBK Mushroom Culture Collection. Version 1.2. The IBK Mushroom Culture Collection of the M.G. Kholodny Institute of Botany. Occurrence dataset https://doi.org/10.15468/dzdsqu accessed via GBIF.org on 2020-10-26.

Clericuzio M., Tabasso S., Garbarino J.A., Piovano M., Cardile V., Russo A., Vidari G. (). Non-Phenolic dicinnamamides from Pholiota Spumosa: Isolation, synthesis and antitumour activity. Eur. J. Org. Chem., 2007, 70: 137-139

Dudka I.O., Heluta V.P., Andrianova T.V., Hayova V.P., Tykhonenko Yu.Ya., Prydiuk M.P., Holubtsova Yu.I., Krivomaz T.I., Dzhagan V.V., Leontyev D.V., Akulov O.Yu., Sivokon O.V. Fungi of Nature Reserves and National Parks of Eastern Ukraine, vol. 2. Kyiv: Aristey, 2009, 428 pp.

Einhellig F. A. Allelopathy: current status and future goals. Washington, DC: American Chemical, 1995

Fujii Y. Overview of research on allelochemicals. Survey of Plant Natural Resources and isolation of allelochemicals in Monsoon Asia" under the 2009 NIAES International Symposium entitled "Challenges for Agro‐Environmental Research in Monsoon Asia" W3‐01, Tsukuba, JP., 2009

Gizaw, B. Cultivation and yield performance of Pholiota nameko on different agro industrial wastes. Academia Journal of Food Research, 2015, 3(3), 32-42.

Inderjit, Wardle D, Karban R., Callaway R. The ecosystem and evolutionary contexts of allelopathy. Trends Ecol. Evolut. 2011, 26:655-662.

Iqbal N., Khaliq A., Cheema Z.A. Weed control through allelopathic crop water extracts and S-metolachlor in cotton. Information Processing in Agriculture, 2020, 7(1): 165-172

Jeon S.M., Wang E.J. Ka K.H. Growth Characteristics and Extracellular Enzyme Activities of Pholiota spp. Mycol. Rep. Proc., 2015, 27:106

Kalacˇ P. Chemical composition and nutritional value of European species of wild growing mushrooms: A review. Food Chemistry, 2009, 113: 9-16

Kato-Noguchi H., Kimura F., Ohno O., Suenaga K. Involvement of Allelopathy in Inhibition of Understory Growth in Red Pine Forests. Journal of Plant Physiology, 2017, 218: 66–73.

Kirk, P. M., Cannon, P. F., David, J. C., Stalpers, J. A. (Eds.). Ainsworth & Bisby's Dictionary of the Fungi. Ninth Edition. 2001, Wallingford: CAB International.

Lebedev V.G, Krutovsky K.V., Shestibratov K.A. Fell Upas Sits, the Hydra-Tree of Death, or the Phytotoxicity of Trees. Molecules, 2019, 24: 1636.

Lohmann M., Scheu S., Müller C. Decomposers and root feeders interactively affect plant defence in Sinapis alba. Oecologia, 2009, 160: 289–298

Molisch H. Der Einfluss einer Pflanze auf die andere-Allelopathie. Fischer, Jena, Germany, 1937.

Osivand A., Araya H., Appiah K., Mardani H., Ishizaki T., Fujii Y. Allelopathy of wild mushrooms – an important factor for assessing forest ecosystems in Japan. Forests, 2018, 9(773): 1-15

Panda A., Mahalik G. Review on allelopathy: a natural way towards wild plant management. Indian Journal of Natural Sciences, 2020, 10(60): 23069-23075

Pegler, D.N. Useful fungi of the world: The Shiitake, Shimeji, Enokitake, and Nameko mushrooms. Journal of Mycology, 2003, 17, 3-5.

Qasem J. R., Foy C. L. Weed allelopathy, its ecological impacts and future prospects. Journal of crop production, 2001, 4(2): 43-119.

Ridwan A.Y, Matoba R, Wu J, Choi J-H, Hirai H, Kawagishi H. A novel plant growth regulator from Pholiota lubrica. Tetrahedron Letters, 2018, 59: 2559–2561.

Salim M.A., Linatoc A.C, Jikan S.S., Jamil S., Latif M.S. Allelopathic effects of Imperata Cylindrica aqueous extract on the germination of Cucumis Sativus and Lolium Perenne. International Journal of Recent Technology and Engineering (IJRTE), 2020, 8(6): 2503-2508

Srikram A., Supapvanich S. Proximate compositions and bioactive compounds of edible wild and cultivated mushrooms from Northeast Thailand. Agriculture and Natural Resources., 2016, 50 (6): 432-436.

Travers-Martin N, Müller C. SpeciWcity of induction responses in a Brassicaceae and their effects on a specialist herbivore. Chem Ecol, 2007, 33: 1582–1597

Wang X.-M., Zhang J, Wu L.-H., Zhao Y.-L., Li T., Li J.-Q., Wang Y.-Z., Liu H.-G. A mini-review of chemical composition and nutritional value of edible wild-grown mushroom from China. Food Chemistry, 2014, 151: 279–285

Wurst S, Langel R, Rodger S, Scheu S. Effects of belowground biota on primary and secondary metabolites in Brassica oleracea. Chemoecology, 2006, 16: 69–73

Zerova M.Ya. Basidiomycetes. In: Handbook of Fungi of Ukraine, vol. 5, issue 2. Eds M.Ya. Zerova, P.E. Sosin, G.L. Rozhenko. Kyiv: Naukova Dumka, 1979, 323 pp.

Завантаження

Опубліковано

28.10.2025